мкм, который затем переносят в 100 мл соево-казеинового бульона (или
среды № 8). Посевы инкубируют в течение 24 – 48 ч. После инкубации при
наличии роста производят пересев бактериологической петлей на
селективные среды – цетримидный агар или ЦПХ-агар. Дальнейшую
идентификацию проводят, как указано выше.
Если в образце обнаружены бактерии, типичные для псевдомонад по
своим морфологическим и тинкториальным свойствам (табл. 7), образующие
сине-зеленый пигмент пиоцианин, содержащие фермент цитохромоксидазу и
растущие при температуре (42 ± 1)
о
С, считают, что ЛС контаминировано
бактериями
P. aeruginosa
.
6.5.
Испытание на отсутствие бактерий
Staphylococcus aureus
Исследуемый образец, растворенный или разбавленный стерильным
буферным раствором или иным разбавителем 1:10, переносят в количестве
10 мл (что соответствует 1 г или 1 мл образца) в 100 мл соево-казеинового
бульона или среды № 8. Перемешивают и инкубируют в течение 24 – 48 ч.
При наличии роста пересевают петлей на маннитно-солевой агар (или среду
№ 10) и инкубируют в стандартных условиях в течение 24 – 48 ч.
Появление после окончания инкубации типичных золотисто-желтых
колоний (табл. 7), окруженных желтыми зонами на среде с маннитом,
свидетельствует о росте
S. aureus,
ферментирующем маннит. Проводят
микроскопическое исследование типичных колоний. При обнаружении в
мазках грамположительных кокков, расположенных в виде виноградных
гроздей, производят пересев на соево-казеиновый агар (или среду № 1).
Инкубируют в стандартных условиях в течение 18 – 24 ч. Для
идентификации проводят тест на наличие коагулазы (п.8.3).
При испытании микробиологической чистоты трансдермальных
пластырей 10 пластырей помещают в 500 мл фосфатного буферного раствора
и осторожно встряхивают в течение 30 минут при нагревании.
Полученную жидкость в объеме 50 мл пропускают через стерильный
мембранный фильтр из нитрата целлюлозы с диаметром пор 0,45 мкм,
Предыдущая < | 1163 | > Следующая | Главная | pharma-14@mail.ru | pharmacopeia.ru | Скачать в PDF