Фармакопея | pharmacopeia.ru | Том 2

Положительный контроль

–

S. aureus

ATCC 6538-P и

S. pyogenes

Dick I.

Перед проведением испытания целесообразно проверить тест-штамм

M. luteus

на лизируемость лизоцимом. Для этого, используя отраслевой

стандарт мутности, готовят микробную взвесь с содержанием 10

микробных

клеток  в  1  мл  и  разливают  ее  в  2  пробирки  по  1  мл.  В  одну  (опытную)
пробирку добавляют 8 мкг лизоцима, растворенного в 1 мл 0,9 %  раствора
натрия  хлорида,  создавая  конечную  концентрацию  фермента  4  мкг/мл.  Во
вторую  (контрольную)  пробирку  прибавляют  1  мл  0,9  %  раствора  натрия
хлорида.  Пробирки  выдерживают  при  комнатной  температуре  30  мин.
Культура  считается  пригодной  для  работы,  если  за  этот  период  в  опытной
пробирке  произойдет  полный  лизис клеток  микрококка, что определяют  по
степени прозрачности содержимого пробирки.

Примечание

Некоторые виды бактерий нормальной микрофлоры (например,

Lactobacillus fermentum

) при отсутствии других факторов патогенности

продуцируют лизоцим, что считается положительным свойством этих

бактерий, т.к. определяет его антагонистическую активность в отношении

патогенных и условно-патогенных микроорганизмов.

2.1.6 Тест на гемолизин

Некоторые бактерии продуцируют такие факторы патогенности, как

гемолизины

−

вещества, разрушающие эритроциты. В связи с этим

продукция гемолизина во многих случаях является маркером вирулентности
микроорганизма.

На кровяном агаре колонии гемолизирующих бактерий окружены

зонами  просветления  (гемолиза).  Для  адекватного  определения
гемолитической активности следует просматривать чашки с посевами против
источника  света,  т.к.  способность  образовывать  гемолизины  (и,
соответственно,  размеры  зон  гемолиза)  может  быть  вариабельной.
Активность  гемолизинов  может  проявляться  в  полном  или  неполном
разрушении  эритроцитов.  Виды  гемолиза  подразделяют  на  альфа-,  бета-  и
гамма-гемолиз.